慢病毒（應用于表達RNAi研究中的病毒）

基本概述

??慢病毒屬是反轉錄病毒科下的一個(gè)屬，包括8種能夠感染人和脊椎動(dòng)物的病毒，原發(fā)感染的細胞以淋巴細胞和巨噬細胞為主，感染個(gè)體最終發(fā)病。慢病毒感染的顯著(zhù)特點(diǎn)是感染個(gè)體在出現典型的臨床癥狀之前，大多經(jīng)歷長(cháng)達數年的潛伏期，之后緩慢發(fā)病，因此這些病原體被稱(chēng)為慢病毒。例如人類(lèi)免疫缺陷病毒(HIV)、猴免疫缺陷病毒(SIV)、馬傳染性貧血(EIA)、貓免疫缺陷病毒(FIV)都是慢病毒屬，慢病毒屬的原文是Lentivirus，其中Lenti-在拉丁文中有慢的意思。

慢病毒載體的研究發(fā)展得很快，研究的也非常深入。該載體可以將

外源基因有效地整合到宿主染色體

應用

慢病毒也被廣泛地應用于表達

RNAi的

siRNA

短，體外合成siRNA對

的抑制作用通常是短暫

siRNA的載體

由RNA聚合酶Ⅲ啟動(dòng)子來(lái)指導RNA合成

慢病毒載體（Lentiviral vector

shRNA

目的基因或目的shRNA整合到宿主細胞基因組的幾率大大增加

慢病毒表達載體，即通常所說(shuō)的穿梭載體，包含了包裝、轉染、穩定整合所需要的遺傳信息。慢病毒包裝質(zhì)粒可提供所有的轉錄并包裝RNA 到重組的假病毒載體所需要的所有輔助蛋白。為產(chǎn)生高滴度的病毒顆粒，需要利用表達載體和包裝質(zhì)粒同時(shí)共轉染細胞，在細胞中進(jìn)行病毒的包裝，包裝好的假病毒顆粒分泌到細胞外的培養基中，離心取得上清液后，可以直接用于宿主細胞的感染，目的基因進(jìn)入到宿主細胞之后，經(jīng)過(guò)反轉錄，整合到基因組，從而高水平的表達效應分子。

特征比較

常用的病毒載體有腺病毒、逆轉錄病毒和慢病毒。

逆轉錄病毒載體只能感染

細胞，而且容量有限，腺病毒一般不能整合到染色體上，只能進(jìn)行瞬時(shí)感染

慢病毒包裝系統一般由慢病毒表達載體和慢病毒包裝載體組成。

而慢病毒包裝質(zhì)粒可提供所有的轉錄并包裝RNA到重組的假病毒載體所需要的所有輔助蛋白。

慢病毒包裝系統一般都是三質(zhì)粒或四質(zhì)粒包裝系統。其中四質(zhì)粒系統比三質(zhì)粒系統在生物安全性上更好一些，所以應用較多。

目的與意義

● 對于一些較難轉染的細胞，如原代細胞、干細胞、不分化的細胞等，能大大提高目的基因轉導效率，而且目的基因整合到宿主細胞基因組的幾率大大增加，這就為RNAi,cDNA 克隆以及報告基因的研究提供了一個(gè)有利的途徑。

● 進(jìn)行穩轉細胞株的篩選；

● 為活體動(dòng)物模型實(shí)驗提供高質(zhì)量的包含目的基因的病毒液；

相關(guān)實(shí)驗

對于一些按常規方法難以轉染甚至無(wú)法轉染的細胞，通過(guò)病毒介導的實(shí)驗能夠大大提高基因的轉導效率，以達到目的基因的高效瞬時(shí)表達。

1. 根據目的基因相關(guān)信息（序列，序列號等），構建含

有外源基因或siRNA的重組載體

2. 對于測序正確的重組質(zhì)粒，提取和純化高質(zhì)量的不含內毒素的重組質(zhì)粒；

3. 使用高效重組載體和病毒包裝質(zhì)粒共轉染293T 細胞，進(jìn)行病毒包裝和生產(chǎn)，收集病毒

液；

4. 濃縮、純化病毒液；

5. 用高質(zhì)量的病毒液感染細胞；

6. 通過(guò)定量PCR精確測定病毒滴度（高精確滴定方法）和Western 分析實(shí)驗結果；

7. 用高質(zhì)量的病毒液感染宿主細胞；檢測基因功能或者siRNA的沉默效率以及使用藥物進(jìn)

行穩定轉染細胞株的篩選，通常狀況下，篩選的細胞克隆株具有長(cháng)期的表達穩定

性。病毒液足夠用于一般的動(dòng)物活體實(shí)驗。

操作手冊

1慢病毒使用操作

2慢病毒安全使用規范

3懸浮細胞感染方法概要

4相關(guān)專(zhuān)業(yè)術(shù)語(yǔ)（詳情可參考公司網(wǎng)站FAQ)

5細胞培養器皿的相關(guān)參數

1.慢病毒使用操作手冊

1.1慢病毒的儲存與稀釋?zhuān)?/p>

1.1.1病毒的儲存：用戶(hù)收到病毒液后在很短時(shí)間內即使用慢病毒進(jìn)行實(shí)驗，可以將病毒暫

時(shí)放置于4 ℃保存；如需長(cháng)期保存請放置于-80℃（病毒置于凍存管，并使用封口膜封口）

A．病毒可以存放于-80℃ 6個(gè)月以上；但如果病毒儲存時(shí)間超過(guò)6個(gè)月，我們建議在

使用前需要重新滴定病毒滴度

B．反復凍融會(huì )降低病毒滴度：每次凍融會(huì )降低病毒滴度10%；因此在病毒使用過(guò)程中

應僅盡量避免反復凍融，為避免反復凍融我們強烈建議客戶(hù)收到病毒后按照每次的使用量

進(jìn)行分裝。

1.1.2病毒的稀釋?zhuān)河脩?hù)需要稀釋病毒時(shí)，請將病毒取出置于冰浴融解后，使用培養目的細

胞用PBS或無(wú)血清培養基（含血清或含雙抗不影響病毒感染）混勻分裝后4℃保存（請盡量

在三天內用完）分裝后使用。

1.2慢病毒用于體外（In Vitro）實(shí)驗：感染培養原代細胞和建系

細胞

1.2.1慢病毒對各種細胞和組織的親嗜性不同，用戶(hù)使用Invabio提供的慢病毒之前可以通過(guò)

查閱相關(guān)文獻，了解慢病毒對您的目的細胞的親嗜性，感染復數（MOI 值）以及在體（In

Vivo）注射所需要的病毒量。如果沒(méi)有相關(guān)文獻支持，可以通過(guò)感染預實(shí)驗得到合適的感染復數（MOI 值）（使用24孔板檢測病毒對目的細胞的親嗜性）

1.2.2慢病毒感染目的細胞預實(shí)驗

1.2.2.1慢病毒感染目的細胞預實(shí)驗注意事項

A．測定慢病毒對目的細胞的親嗜性時(shí)，需要同時(shí)設置對慢病毒親嗜性較高的細胞（HEK293T，Hela）作為平行實(shí)驗的對照細胞。

B．在進(jìn)行慢病毒感染實(shí)驗時(shí)，可以用完全培養基（培養目的細胞用）稀釋?zhuān)焕碚撋希?/p>

血清，雙抗或者其他營(yíng)養因子的完全培養基不影響慢病毒的感染效率。

C． Invabio提供的病毒單位為T(mén)U/ml，即每毫升中含有具有生物活性的病毒顆粒數。如：

病毒滴度為>1X10TU/ml 即每毫升病毒液中至少含有1X10個(gè)具有生物活性的慢病毒顆粒。

1.2.2.2以24孔培養板為例，進(jìn)行目的細胞和HEK293T 細胞的感染預實(shí)驗

實(shí)驗前按照不同的MOI設置不同的感染孔，并根據MOI和細胞數量計算所需要的病毒量，如

有必要可以使用PBS溶液或者無(wú)血清培養基稀釋病毒原液

第一天，準備細胞：在24孔培養板接種若干孔，每個(gè)孔內接種3~5X10個(gè)目的細胞，鋪板時(shí)

細胞的融合率為50%左右，每孔培養基體積為100 μl；進(jìn)行病毒感染時(shí)細胞的融合度約為

70%左右。

第二天，準備病毒：取出4℃保存的病毒，使用臺式離心機離心20 秒（使病毒完全懸于

離心管底部即可）；如果是凍存在-80℃的病毒需要先在冰上融化后使用。亦可以根據實(shí)驗

室的實(shí)際情況將按照MOI準確計算好的慢病毒稀釋到培養基中，并盡可能保證所獲得的含有

慢病毒的培養基的總體積為最小體積，以期獲得最佳的感染效率。

第二天，感染目的細胞：病毒準備好之后，從培養箱中拿出細胞，首先觀(guān)察細胞生長(cháng)狀態(tài)，

如細胞狀態(tài)較好則開(kāi)始實(shí)驗，

a使用移液器吸取準確體積的病毒液加入準備好的培養基

b吸去培養基的培養器皿中的培養基（如果細胞生長(cháng)良好，密度適宜，則不用換液）

c在目的細胞和對照細胞中分別加入計算好的病毒液

d混勻后放于二氧化碳培養箱（37℃、5%CO2）孵育過(guò)夜

注：感染前細胞的狀態(tài)好壞對最終的感染效果高低影響很大，所以務(wù)必保證加病毒之前細胞

處于良好的生長(cháng)狀態(tài)

亦可以將預先準備好的培養基和慢病毒的混合液直接加入培養器皿中

慢病毒對目的細胞的感染效率較低，通過(guò)提高M(jìn)OI 值可以提高病毒的感染效率，但是當

MOI高于20時(shí)，我們建議客戶(hù)在培養基中加入ploybrene（8 μg/ml左右）來(lái)提高病毒的感染

效率。

A．第三天，更換培養液：一般在24小時(shí)候后將含有慢病毒的培養液更換成正常培養液；在

感染后觀(guān)察細胞狀態(tài)，如果慢病毒對細胞有明顯毒性作用而影響細胞生長(cháng)狀態(tài)，可以最

短在加病毒4小時(shí)候更換新鮮培養液后繼續培養（建議在8-12小時(shí)更換為宜）。第一次換

液后，如果慢病毒對細胞沒(méi)有明顯毒性作用，按照正常培養條件培養換液。

B．第六天，感染效率檢測：在倒置熒光顯微鏡觀(guān)察熒光，估計慢病毒感染目的細胞的效率；

如何由于目的基因較大而造成選擇的載體不能攜帶Marker Gene的，可以通過(guò)Real-time

RT-PCR檢測目的基因的表達來(lái)拍評估感染效率。

注意：

Invabio提供的病毒載體上帶有GFP綠色熒光蛋白，用戶(hù)可以在病毒感染96小時(shí)后用倒置

熒光顯微鏡觀(guān)察GFP 綠色熒光，以觀(guān)察病毒對目的細胞的感染情況。

如果慢病毒載體攜帶其他Marker Gene如RFP\BFP可以用熒光顯微鏡在對應的激發(fā)光波

長(cháng)下觀(guān)察熒光表達的情況

慢病毒表達時(shí)間較慢，熒光表達所需時(shí)間較長(cháng)，建議感染后96小時(shí)后觀(guān)測熒光表達。感染

后的細胞可以連續培養一周，通過(guò)觀(guān)察熒光的表達時(shí)間和表達強度來(lái)確定慢病毒對目的細胞

的感染情況。感染期間請根據細胞生長(cháng)的情況對細胞進(jìn)行及時(shí)換液，以保證細胞良好的生長(cháng)

狀態(tài)。

2.慢病毒使用安全使用規范

Invabio提供的慢病毒為“自殺”性病毒，即病毒感染目的細胞后不會(huì )再感染其他細胞，也不

會(huì )利用宿主細胞產(chǎn)生新的病毒顆粒。慢病毒中的毒性基因已經(jīng)被剔除并被外源性目的基因所

取代，屬于假型病毒因此沒(méi)有毒性作用。但該病毒仍然具有可能的潛在的生物學(xué)危險，

Invabio建議不要使用編碼已知或可能會(huì )致癌的基因的假型病毒。除非已經(jīng)完全公認某個(gè)基

因肯定沒(méi)有致癌性，否則均不建議采用假型病毒進(jìn)行生物學(xué)實(shí)驗。如有疑問(wèn)，請與我們聯(lián)系。

使用時(shí)請參照如下所示進(jìn)行實(shí)驗：

2.1．病毒操作時(shí)最好使用生物安全柜。如果使用普通超凈工作臺操作病毒，

請不要打開(kāi)排風(fēng)機。

2.2．病毒操作時(shí)請穿實(shí)驗服，帶口罩和手套。

2.3．操作病毒時(shí)特別小心不要產(chǎn)生氣霧或飛濺。如果操作時(shí)超凈工作臺有病毒

污染，請立即用70%乙醇加1%的SDS 溶液擦拭干凈。接觸過(guò)病毒的槍頭，

離心管，培養板，培養液請于84 消毒液或1%SDS 中浸泡過(guò)夜后棄去。

2.4．用顯微鏡觀(guān)察細胞感染情況時(shí)應遵從以下步驟：擰緊培養瓶或蓋緊培養

板。用70%乙醇清理培養瓶外壁后到顯微鏡處觀(guān)察拍照。離開(kāi)顯微鏡實(shí)驗

臺之前，用70%乙醇清理顯微鏡實(shí)驗臺。

2.5．如需要離心，應使用密封性好的離心管，或者用封口膜封口后離心，

而且盡量使用組織培養室內的離心機。

2.6．脫掉手套后，用肥皂和水清洗雙手。

3.懸浮細胞感染方法概要

1.1根據細胞的量將細胞在1.5ml 管中離心收集然后用100-200ul 的無(wú)血清培養液稀釋細胞

沉淀，以細胞完全浸沒(méi)在培養基中為準

1.2按照MOI 換算病毒顆粒數量，吸取病毒液加入細胞中，將1.5ml 管放在37℃度培養箱

中孵育30 分鐘

1.3將管中混合溶液吸出加到培養皿中或孔里

1.4加入足夠量的新鮮培養液

1.512 小時(shí)后換液

1.696 小時(shí)后觀(guān)察細胞陽(yáng)性率

4.相關(guān)專(zhuān)業(yè)術(shù)語(yǔ)

（詳情可參考公司網(wǎng)站FAQ）

常用術(shù)語(yǔ)：

MOI：病毒感染復數傳統的MOI 概念起源于噬菌體感染細菌的研究。其含義是感染時(shí)噬菌體

與細菌的數量比值，也就是平均每個(gè)細菌感染噬菌體的數量。噬菌體的數量單位為pfu。

一般認為MOI 是一個(gè)比值，沒(méi)有單位，其實(shí)其隱含的單位是pfu number/cell。后來(lái)MOI 被

普遍用于病毒感染細胞的研究中，含義是感染時(shí)病毒與細胞數量的比值，本手冊中提到的

MOI都是沿用這個(gè)概念。

然而，由于病毒的數量單位有不同的表示方式，從而使MOI 產(chǎn)生了不同的含義。能產(chǎn)生細

胞裂解效應的病毒例如單純皰疹病毒等習慣上仍用pfu 表示病毒數量，因此其MOI 的含義

與傳統的概念相同。

MOIstands for "Multiplicity of Infection." It is the ratio of infectiousvirus particles to the number of cells being infected. The recommended MOI isin the range of 0.1 (meaning that you inoculate 1 virus particle for every 10cells) to 0.01. The general theory behind MOI is to introduce one infectiousvirus particle to every host cell that is present in the culture. However,

more than one virus may infect the same cellwhich leaves a percentage of cells uninfected. This

occurrence can be reduced by using a higherMOI to ensure that every cell is infected.

5.細胞培養器皿的相關(guān)參數

慢病毒載體的包裝與純化

1實(shí)驗流程

制備慢病毒穿梭質(zhì)粒及其輔助包裝原件載體質(zhì)粒，四種質(zhì)粒載體分別進(jìn)行高純度無(wú)內毒素抽提，共轉染293T細胞，轉染后8 h 更換為完全培養基，培養48h后，收集富含慢病毒顆粒的細胞上清液，對其濃縮后得到高滴度的慢病毒濃縮液，感染Hela細胞后定量PCR檢測病毒滴度。體內和體外實(shí)驗對慢病毒滴度的要求不同，生產(chǎn)過(guò)程中可以通過(guò)濃縮得到不同滴度的慢病毒顆粒。

2實(shí)驗材料

2.1慢病毒載體、包裝細胞和菌株

慢病毒載體系統（Tronolab）該病毒包裝系統為四質(zhì)粒系統，組成為pRsv-REV， pMDlg-pRRE，pMD2G，目的干擾質(zhì)粒。其中目的干擾質(zhì)粒能表達綠色熒光蛋白（GFP）。

細胞株 293T，慢病毒的包裝細胞，為貼壁依賴(lài)型成上皮樣細胞，生長(cháng)培養基為DMEM（含10% FBS）。貼壁細胞經(jīng)培養生長(cháng)增殖形成單層細胞。

菌株；大腸桿菌菌株DH5α。用于擴增慢病毒載體和輔助包裝載體質(zhì)粒。

2.2主要試劑

試劑名稱(chēng)

生產(chǎn)廠(chǎng)家

貨號

包裝細胞293T細胞株

中科院上海細胞所

大腸桿菌菌株DH5α

Invitrogen公司

胎牛血清

Invitrogen公司

胰蛋白酶

Invitrogen公司

限制性?xún)惹忻?/p>

Fermentas

T4DNA連接酶

NEB公司

M0202V

質(zhì)粒DNA提取試劑盒

Axygen公司

制備感受態(tài)試劑盒

BIOSCIENCES

凝膠回收試劑盒

Qiagen公司

1kb/100bpladder

Fermentas

2.3 ；主要儀器

儀器名稱(chēng)

生產(chǎn)廠(chǎng)家

貨號

PCR儀

Applied Biosystems公司

電泳儀

Bio-rad公司

熒光倒置顯微鏡

奧林帕斯

冷凍超速離心機

Hitachi

細胞培養箱

healforce

凝膠成像儀穩壓DNA電泳儀

Tianneng

恒溫搖床

上海博訊儀器

電熱恒溫培養箱

上海博訊儀器

移液器

eppendorf

電熱恒溫水浴鍋

上海一恒實(shí)驗設備有限公司

數碼凝膠處理系統

天能科學(xué)儀器

一次性平皿

Cell-star

燒瓶

3慢病毒載體系統質(zhì)粒基本信息和圖譜

該病毒包裝系統為四質(zhì)粒系統，組成為pRsv-REV， pMDlg-pRRE，pMD2G，目的穿梭質(zhì)粒。其中穿梭質(zhì)粒（目的穿梭質(zhì)粒）含有能表達綠色熒光蛋白（GFP）；pRsv-REV， pMDlg-pRRE，pMD2G含有病毒包裝所必須的元件。

3.1穿梭質(zhì)粒：目的穿梭質(zhì)粒

3.2pRsv-REV

3.3pMDlg-pRRE

3.4pMD2G

4慢病毒生產(chǎn)實(shí)驗步驟

4.1慢病毒包裝細胞轉染用胰蛋白酶消化對數生長(cháng)期的293 T細胞，細胞密度為0.5×10時(shí)；重新接種于25 mL的15cm細胞培養皿，37℃，50 mL/L CO2培養箱內培養；

4.2制備慢病毒包裝系統中四種質(zhì)粒DNA溶液；

pRsv-REV 10 μg，

pMDlg-pRRE 15 μg，

pMD2G 7.5 μg,

干擾質(zhì)粒 20 ug

加入無(wú)菌水定容至1800 μL，再加入CaCl2 （2.5 mol/L) 溶液200 μL，混勻，加入2×BBS緩沖鹽溶液2000 μL，室溫放置20～30 min；

4.3 ；當細胞密度達60%～70%時(shí)轉染. 將DNA和磷酸鈣混合液轉移至含單層細胞的培養液中，混勻，培養12 h后棄去含有轉染混和物的培養液，加入PBS 15 mL，輕搖后棄去，重復該步驟3次.；

4.4每瓶細胞中加入含100 mL/L小牛血清的細胞培養液15 mL，繼續培養48 h.；

4.5收集轉染72 h的293T細胞上清液；

4.6將收集的上清液于4℃，4000 g離心10 min，收集上清液；

4.7將各種不同RNA干擾質(zhì)粒上清液以0.45 μm濾器過(guò)濾；

4.8于40 mL超速離心管中，4℃，25000 r/min離心20 min；

4.9而后以冰PBS液，分別溶于500ul Dmem，和500ul PBS重旋病毒沉淀于4℃溶解過(guò)夜